系统性红斑狼疮11;信号转导子和转录激活子4
STAT4响应白介素12磷酸化(请参阅IL12B;161560),对于IL12信号转导至关重要。有关STAT的更多信息,请参见STAT1(600555)。
细胞遗传学位置:2q32.2-q32.3
基因座标(GRCh38):2:191,029,575-191,172,683
Location | Phenotype | Phenotype MIM number |
Inheritance | Phenotype mapping key |
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2q32.2-q32.3 | {Systemic lupus erythematosus, susceptibility to, 11} | 612253 | 3 |
▼ 克隆和表达
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山本等(1997)克隆了人STAT4 cDNA。他们认为,STAT4和STAT1都对应到2q32染色体,可能是通过串联基因重复产生的。但是,STAT1普遍存在,而STAT4在特定组织中表达,包括脾脏,心脏,大脑,外周血细胞和睾丸。
▼ 测绘
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山本等(1997)通过荧光原位杂交将STAT4和STAT1基因定位到染色体2q32.2-q32.3。
▼ 基因功能
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Diefenbach等(1999)研究了IL12和一氧化氮合酶2(NOS2; 163730)与小鼠对寄生虫利什曼原虫的先天免疫的关系。在没有NOS2活性的情况下,IL12无法阻止利什曼原虫的扩散,不能刺激自然杀伤细胞的细胞毒性或干扰素-γ(IFNG; 147570)释放,也不能激活TYK2(176941)和酪氨酸磷酸化STAT4 NK细胞中IL12的中央信号传感器。IFN-α/β(I型干扰素;参见147660)对NK细胞中TYK2的激活也需要NOS2。因此,NOS2衍生的NO是细胞因子信号转导的先决条件,并且在小鼠的先天免疫中发挥功能。
细胞介导的免疫依赖于巨噬细胞和树突状细胞产生IL12,继而刺激自然杀伤细胞分泌IFNG(147570)并导致Th1细胞活化。通过RNA酶保护分析,免疫荧光显微镜和蛋白质印迹分析,Frucht等(2000年)表明IFNG和脂多糖(LPS)协同诱导STAT4在纯化的人单核细胞和树突状细胞中的表达。在Th2细胞因子IL-4(147780)和IL10(124092)由IFNG和LPS阻断STAT4表达的诱导。尽管激活的单核细胞产生IL12,但它们仅拥有β-1 IL12受体(IL12RB1; 601604),而不拥有β-2受体(IL12RB2; 601642)),因此无法很好地结合IL12。Frucht等(2000)指出,IFNA已被证明能在人淋巴样细胞中诱导STAT4磷酸化。他们表明,与小鼠不同,纯化的人单核细胞与IFNA孵育可诱导STAT4磷酸化。通过免疫组织化学,Frucht等(2000)证明类风湿滑膜巨噬细胞表达STAT4。作者得出结论,当IL12或其受体不可用时,IFNA可以补充IL12信号传导的作用。
Lovato等(2003年)发现来自克罗恩病(见266600)患者而非健康志愿者的肠道T细胞显示出STAT3(102582)和STAT4的组成性激活,表明在Crohn 中存在异常的STAT / SOCS(见SOCS3; 604176)信号传导。疾病。
庞等(2007年)调查了30名中国活动性溃疡性结肠炎(UC;参见266600)患者与30名健康对照相比,IL12B,IFNG的表达以及STAT4信号在疾病部位粘膜组织中的活化状态。他们发现在UC患者中IL12B的mRNA表达增加,而在IFNG中没有,并且Western印迹分析表明,来自UC患者的粘膜细胞核中STAT4的水平升高,而磷酸化STAT4的水平升高。作者得出的结论是,活跃的中国UC患者可能存在IL12 / STAT4和/或IL23 / STAT4信号转导升高的状态,可能是持续的,并且可能参与了UC的慢性炎症。
IL12信号转导后,STAT4的激活需要STAT4的N末端蛋白相互作用域(N域)。Ota等(2004)显示,STAT4的N结构域中的突变阻止N结构域二聚化和非磷酸化STAT4二聚体的组装,并阻止STAT4被细胞因子受体磷酸化。其他STAT家族成员也观察到N域二聚化,但具有同型性。Ota等(2004)提出非磷酸化的STAT二聚体的预缔合可能允许活化后形成活性二聚体。
Shin等(2005年)确定了STAT4启动子中的几个转录调控元件,但在91例哮喘或关节炎患者中没有检测到这些元件的突变。相反,在用DNA甲基转移酶抑制剂处理后,T细胞中STAT4的表达急剧增加。STAT4启动子近端调节元件中甲基化位点的截短显着增强了转录活性。Shin等(2005)提出,在T细胞中,STAT4表达的调节与DNA超甲基化有关,而不是与启动子多态性有关。
Yap等(2005年)确定了河豚鱼,小鼠和人STAT4的5个主要侧翼区域中的Ikaros(IKZF1 ; 603023)结合元件。反式激活,电泳迁移率变化和RNA干扰分析表明,Ikaros与STAT4启动子结合,并参与人T细胞中STAT4的调控。
▼ 分子遗传学
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有关STAT4基因变异与类风湿关节炎之间可能存在的关联的讨论,请参阅RA(180300)。
有关STAT4基因变异与系统性硬化之间可能联系的讨论,请参阅(181750)。
系统性红斑狼疮的易感性
由于在系统性红斑狼疮患者的基因组扫描中已经报道了包含STAT4基因的连锁峰(请参阅SLEB11; 612253),Remmers等人(2007年)包括对3例SLE患者和欧洲血统控制对象的基因分型,作为与风湿性关节炎相关的染色体2q连锁区的大型病例对照疾病关联分析的一部分(180300)。他们发现以STAT4 SNP rs7574865(600558.0001)与SLE密切相关,存在于病例患者的31%的染色体和对照组的22%的染色体中(P = 1.87 x 10(-9);患者染色体中具有风险等位基因的比值与对照组相比,1.55)。与没有等位基因相比,高风险等位基因的纯合性与SLE风险增加了一倍以上,类风湿关节炎的风险增加60%。孤立地,Gateva等(2009)和Han等(2009)在rs7574865复制了SLE易感性与STAT4的关联。
通过测量来自不同种族背景的270名SLE患者队列中的外周血细胞(PBMC)中的血清IFNA活性和IFNA诱导的基因表达,Kariuki等人(2009)显示STAT4 SNP rs7574865的T等位基因与较低的血清IFNA活性和较高的IFNA诱导的基因表达同时相关。尽管IRF5(607218)SLE风险基因型与较高的血清IFNA活性相关,但STAT4的影响在PBMC对血清IFNA的敏感性中占主导地位。Kariuki等(2009年)得出结论,STAT4的风险变异在IFNA通路失调和SLE易感性中至关重要。
▼ 等位基因变异体(1个选定的示例):
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.0001系统性红斑狼疮,易感性至11
STAT4,GT(rs7574865)
由于在系统性红斑狼疮患者的基因组扫描中已经报道了含有STAT4基因的连锁峰(参见SLEB11; 612253),Remmers等(2007年)包括对3例SLE患者和欧洲血统控制对象的基因分型,作为与风湿性关节炎相关的染色体2q连锁区的大型病例对照疾病关联分析的一部分(180300)。他们发现以STAT4 SNP rs7574865标记的单倍型与SLE密切相关,存在于病例患者的31%染色体和对照组的22%(P = 1.87 x 10(-9);在患者染色体中具有风险等位基因的比值比对照组, 1.55)。与没有等位基因相比,高风险等位基因的纯合性与SLE风险增加了一倍以上,类风湿关节炎的风险增加60%。孤立地,Gateva等(2009)和Han等(2009)在rs7574865复制了SLE易感性与STAT4的关联。
为了确定SLE易感性的风险位点,Gateva等人(2009年)从2466个区域中选择了SNP,这些基因在全基因组研究中显示出与SLE相关的名义证据(P小于0.05),并在1963例病例和4329例对照的孤立样本中对它们进行了基因分型。这个新队列在rs7574865复制了与STAT4的关联(组合P值= 1.4 x 10(-41),OR = 1.57,95%置信区间1.49-1.69)。
Han等(2009)使用Illumina-Human610-Quad BeadChips对1,047例病例和1,205例对照进行了基因分型,并在另外两个队列(3,152例和7,050例)中复制了78个SNP,从而对中国汉族人群进行了SLE的全基因组关联研究。Han等(2009年)在rs7574865发现与STAT4基因相关(合并P值= 5.17 x 10(-42),优势比= 1.51,95%置信区间1.43-1.61)。
通过测量来自不同种族背景的270名SLE患者队列中的PBMC中的血清IFNA(147660)活性和IFNA诱导的基因表达,Kariuki等人(2009)显示STAT4 SNP rs7574865的T等位基因与较低的血清IFNA活性和较高的IFNA诱导的基因表达同时相关。尽管IRF5(607218)SLE风险基因型与较高的血清IFNA活性相关,但STAT4的影响在PBMC对血清IFNA的敏感性中占主导地位。Kariuki等(2009年)得出结论,STAT4的风险变异在IFNA通路失调和SLE易感性中至关重要。