EphA2在鼻咽癌致病过程中的作用及治疗靶点展望

摘要

促红细胞生成素产生肝细胞受体（erythropoietin-producing hepatocellular receptor，Eph）及其配体ephrin，是最大受体酪氨酸激酶（RTK）家族，由于配体ephrin和Eph受体均结合在细胞膜上，激活的信号转导通路，一般发生在直接接触的细胞之间，具有双向信号转导的独特特点。Eph受体-ephrin配体导致排斥性细胞收缩反应在许多生理和病理过程中起重要作用，在16种Eph受体中，EphA2与肿瘤的联系最强，因此已被广泛研究。肿瘤细胞中的EphA2信号传导可能具有促进肿瘤或抑制肿瘤的作用，取决于肿瘤微环境，EphA2具有需要配体和激酶活性的经典信号，也具有不需要配体或激酶活性的非经典信号形式。本文就近年来Epha2在鼻咽癌致病过程中非受体依赖机制和作为EB病毒感染关键分子的作用及治疗靶点展望等研究进展进行综述，以期为鼻咽癌的预防和治疗提供新的思路。

概述

鼻咽癌（nasopharyngeal carcinoma，NPC）好发生于中国华南地区、东南亚及部分非洲地区，全世界约80%的NPC发生在中国，严重威胁人们的生命健康。NPC对放疗较敏感，随着放疗技术的不断发展，早期NPC的5年生存率已达95%[1]。病理上NPC以低分化非角化性鳞癌和未分化癌多见，其他类型为角化性鳞状细胞癌。NPC发病与遗传因素、EB病毒感染、环境因素、饮食习惯等因素有关。但在临床实践中，由于NPC发病部位隐匿，早期症状的非特异性导致确诊时常处于中晚期，同时伴有较高的复发率和（或）远处转移，很大程度上增加了死亡率[2]。因此早期的筛查和诊断，寻找新的治疗靶标，对提升NPC整体诊治水平具有重要意义。

促红细胞生成素产生肝细胞受体（erythropoietin- producing hepatocellular receptor，Eph）及其配体ephrin[3]，是最大受体酪氨酸激酶（RTK）家族，RTK通常通过与可溶性配体结合而激活。区别于其他RTK家族，ephrin配体和Eph受体均结合在细胞膜上，激活信号的转导通路，一般发生在直接接触的细胞之间，双向信号转导是其独特特点[4]。Eph受体是一种膜结合型Ⅰ型糖蛋白，主要由N末端糖基化配体结合区、跨膜区和胞内具有酪氨酸激酶活性区域构成。ephrin配体通过A类糖基磷脂酰肌醇锚蛋白（GPI）锚定作用或通过跨膜蛋白和包括1个PDZ-结合基序的胞质区（B类）与细胞膜结合，与此相对应是A类或B类Eph受体。Eph受体共有16个亚型，即EphA（1~ 10）和EphB（1~6）[5]。

配体受体结合产生的正向信号通常需要酪氨酸激酶结构域活化，激活的Eph受体通过招募调节Rho家族蛋白（包括RhoA、Rac和CDC42）GTP酶激活状态，针对细胞骨架改变、细胞黏附、细胞运动性能产生调控。配体受体结合还可以招募p120Ras-GAP，抑制RAS家族蛋白（H-RAS、R-RAS），从而抑制RasERK通路[6]。

Eph受体-ephrin配体相互作用和信号转导通常导致细胞排斥、分离、细胞收缩、失去黏着斑和细胞变圆[4, 7]，这种排斥性细胞收缩反应在许多生理和病理过程中起到关键作用，包括胚胎发育、神经系统发育中轴突的引导和损伤后组织再生的抑制[4]。在癌细胞中，Eph受体引起的排斥反应对恶性肿瘤在不同状态下有着不同的影响。

01

EphA2的信号特点

在16种Eph受体中，EphA2与肿瘤的联系最强，因此已被广泛研究[8-10]。肿瘤细胞中的EphA2信号转导可能具有促肿瘤或抑肿瘤的作用，这取决于肿瘤微环境[11]，EphA2经典信号转导涉及Eph-ephrin结合、酪氨酸自磷酸化和激酶活性。在正常组织中，EphA2在上皮细胞中表达，膜结合的Ephrin-A成员（A1、A2、A3、A4和A5）在邻近细胞中表达，其结合EphA2，引发配体依赖信号[12]。EphA2配体依赖信号能有效抑制Ras/ERK的信号通路和ErbB等其他生长因子受体激活的PI3K/AKT致癌信号通路[13-14]。

EphA2也可以产生不需要配体或激酶活性（非经典信号）的另一种信号形式，并且在连接激酶结构域和SAM结构域的片段中涉及S897的磷酸化，表现为癌蛋白功能。EphA2S897磷酸化是由丝氨酸/苏氨酸激酶（如AKT、RSK和PKA）引起的，并促进细胞迁移、侵袭、转移和肿瘤干细胞样特征。S897的磷酸化对促进癌细胞恶性肿瘤的EphA2非经典信号机制至关重要[15-17]。在癌症进展过程中，受体EphA2的过度表达可导致其配体无关的原癌性激活，这是由与配体Ephrin- A的结合减少引起的。这些非经典的EphA2受体的原癌性作用可通过配体刺激逆转，触发了EphA2内在的肿瘤抑制信号通路，包括抑制PI3K/ AKT和ERK通路[18]。EphA2其他促瘤机制包括EphA2的配体结合区常被膜型金属蛋白酶MT1- MMP切割，促进配体非依赖的信号转导，锚定不依赖性生长和细胞迁移[19]，而解整合素-金属蛋白酶ADAM12增强Ephrin-A1从EphA2切割促进肿瘤转移[20] （图 1）。

图 1 EphA2在肿瘤中的作用

02

EPHA2表达在NPC致病过程中的作用

2.1 NPC中EPHA2信号通路与临床意义

Li等[21]发现，在高转移性NPC细胞中，相对于非转移性NPC细胞，EphA2的S897处磷酸化显著上调，而EphrinA1的表达水平显著降低。AKT/Stat3/介导下磷酸化S897-EphA2与EphA2依赖性NPC细胞生长、侵袭、转移和干性呈正相关，与患者总生存率呈负相关。EphA2的S897磷酸化位点可作为NPC的一个有前景的治疗靶点。该研究同时报道了ANXA1与Cbl竞争结合EphA2，通过抑制Cbl介导的EphA2泛素化降解，提高EphA2稳定性，从而促进NPC的体内、外生长和转移。有研究[22-23]发现，NPC组织中EphA2表达增多，EphA2的表达与临床分期及淋巴结转移显著相关。上调EphA2表达可提高NPC5-8F细胞的存活率。EphA2的过度表达通过调节PI3K/Akt信号通路介导的细胞周期进程而非凋亡过程，其过度表达降低了NPC细胞对紫杉醇的敏感性。EphA2降表达可提高对紫杉醇化疗药物的敏感性。EphA2还可以通过介导P-gp蛋白表达，进而调控NPC细胞紫杉醇耐药性，P13K/AKT通路可能参与这一过程，因此EphA2有望成为NPC紫杉醇化疗增敏靶点[24]。

2.2 EPHA2是NPC EB病毒感染的关键分子

非角化性NPC是我国NPC的主要类型，EB病毒（epstein-barr virus，EBV）感染是非角化性NPC最主要的致病因素，几乎所有的非角化性NPC患者均存在EBV感染。EBV的感染增加了发生恶性肿瘤的危险，EBV相关性肿瘤主要包括伯基特淋巴瘤、霍奇金淋巴瘤、弥漫大B淋巴瘤、NK/T细胞淋巴瘤、胃癌、NPC等。

EBV主要感染B淋巴细胞和上皮细胞[25]，EBV进入靶细胞是EBV致病的重要步骤，需要病毒糖蛋白和细胞受体介导的病毒膜和宿主细胞膜融合。病毒糖蛋白包括gp350、gHgL、gB和gp422，虽然B细胞和上皮细胞的感染机制不同，gHgL和gB是B细胞和上皮细胞感染共同所必需的蛋白。

EBV感染B细胞需要其糖蛋白gp350或剪接突变体gp220与细胞表面受体CD21之间的相互作用，以及病毒糖蛋白gp42与MHCⅡ的相互作用[26-27]，活化gp42能够将信号转导至gH/gL和gB，以防止其与包括整合素受体在内的其他细胞受体相互作用。因此，gp42被认为是EBV特异性感染B细胞所必需的[28-30]。与B细胞不同，EBV进入上皮细胞与gp350/ gp220和gp42无关，而上皮细胞的EBV感染也需要糖蛋白gH/gL和gB[31-34]。Chesnokova等[35-36]研究表明，糖蛋白gH/gL与3种上皮整合素受体（&α;v&β;5、&α;v&β;6和&α;v&β;8）的相互作用与EBV进入上皮细胞有关。近年有研究报道，EphA2受体也可以作为介导EBV感染进入受体，Chen等[38]研究发现，EphA2与EBV编码的gH/gL相互作用，促进EBV融合和内吞，此外发现整合素受体&α;v&β;5、&α;v&β;6和&α;v&β;8对EBV进入上皮细胞无影响，这与Chesnokova等[36-37]发现不一致。

Zhang等[38]通过整合微阵列和RNA干扰筛选分析发现，EphA2对EBV进入上皮细胞有重要作用。EphA2敲除可显著降低EBV上皮细胞感染，EphA2过表达增加上皮细胞EBV感染。在易受EBV感染的B细胞淋巴瘤细胞系（Akata、Akata-EBV和Raji）中未检测到EphA2的表达，表明EphA2对上皮细胞的EBV感染是必需的，但对B细胞感染则非必需。EphA2的配体结合区和纤维黏连蛋白Ⅲ型重复区是EphA2介导的EBV感染的必需区域。

上皮细胞感染EBV需要EphA2，但EBV编码蛋白同样调节EphA2的表达。Xiang等[39]研究发现，EBV阳性NPC细胞中EphA2的表达水平明显高于EBV阴性NPC细胞，PI3K/AKT信号通路在NPC的异种移植和临床标本中均被显著激活。Miao等[40]报道EphA2和AKT之间的相互调节环，非经典途径的EphA2是AKT的底物，提示EBV可能通过AKT信号途径调节EphA2的表达。

03

EPHA2的靶向治疗展望

EphA2在NPC中过表达以及其在正常组织中有限的功能提示可以作为开发新的抗肿瘤药物的候选靶标，并为开发新的阻断EBV感染策略提供新的选择。针对EphA2的各种治疗策略正在开发中，包括小分子拮抗剂、ANXA1衍生肽、ephrinA1多肽类似物、单克隆抗体、免疫治疗、RNAi介导的EphA2抑制、免疫偶联物，为治疗肿瘤提供了宝贵的机会。

Zhang等[38]在体外实验中应用可溶性EphA2蛋白、抗EphA2抗体、可溶性EphA2配体ephrin A1或Eph A2抑制剂2，5-二甲基吡咯苯甲酸衍生物有效阻断EBV上皮细胞感染。另一种小分子酪氨酸激酶抑制剂达沙替尼具有对EphA2的有效抑制活性。达沙替尼是一种口服活性抑制剂，其作用靶向多种激酶，包括BCR-ABL和Src家族激酶[41]。一项进行中的研究发现，基于ANXA1与EphA2结合的N端氨基酸20~30区，应用一种ANXA1衍生肽A1，其能切断ANXA1与EphA2的连接，成功下调EphA2，并在体内外抑制NPC的致癌性。EphA2高表达的胶质母细胞瘤U-251MG细胞用EphrinA1 cDNA转染，结果显示显著降低EphA2水平，显著抑制细胞增殖和迁移[42]。Koolpe等[43]尝试利用EphrinAl多肽类似物封闭EphA2治疗肿瘤。EphA2激动剂单克隆抗体可以降低卵巢癌HeyA8细胞的EphA2水平，在体内研究中EphA2激动剂单克隆抗体或与剂紫杉醇联合使用，显著抑制了鼠肿瘤的生长[44]。EphA2表位在肿瘤细胞和正常细胞中的差异表达为肿瘤免疫治疗提供了靶点[45]。EphA2肽段在多种肿瘤中被呈递，能够诱导肿瘤特异性CD8+T细胞反应[46]，因此以EphA2为靶点的免疫治疗研究逐步开展。为了抑制EphA2的过度表达，RNA干扰（RNAi）方法特异性沉默EphA2基因表达的序列已经得到应用，在胰腺癌来源的MIA-PaCa2细胞中，RNAi抑制EphA2表达，同时抑制裸鼠异种移植模型中的肿瘤生长[47]。

由于其在肿瘤细胞中的表达模式，EphA2受体被认为是一个很有前途的肿瘤归巢靶向传递策略，123B9靶向EphA2酪氨酸激酶受体配体结合区。在胰腺癌和黑色素瘤模型中，123B9与紫杉醇结合，比未结合药物更有效[48]。EphA2靶向免疫偶联物将选择性地诱导癌细胞的细胞毒性，同时保留正常细胞，EphA2单克隆抗体1C1偶联到高效微管抑制剂MMAF（monomethyl auristin phenylalanine），在EphA2阳性卵巢癌HeyA8细胞和原位卵巢癌模型中显示出疗效[49]。BT5528为双环肽结合到MMAE（maleimidocaproyl-monomethyl auristatin E）显示出更强的药代动力学和更小的毒副作用[50]。

随着针对EphA2的各种途径靶向治疗研究不断取得进展，EphA2有望成为开发新型NPC靶向治疗方法的一个有前途的策略（图 2），为NPC患者的治疗提供了宝贵的机会。

图 2 EphA2在NPC致病过程中的作用及治疗靶点

04

结语

EPHA2在NPC中致病过程和EBV感染中的作用是明确的，EphA2受体及其ephrin配体之间的相互关系复杂。关于EphA2和ephrin配体在其他生长因子受体及其肿瘤微环境中的功能需要进一步阐明，因此探明EphA2在NPC发生和发展中的分子机制将为今后NPC诊断和靶向治疗提供新的线索，为合理设计针对Eph-ephrin系统的靶向治疗策略提供理论依据。

End

参考文献：

[1]    

中国抗癌协会肿瘤标志专业委员会鼻咽癌标志物专家委员会. 鼻咽癌标志物临床应用专家共识[J]. 中国癌症防治杂志, 2019, 11（3）: 183-193. DOI:10.3969/j.issn.1674-5671.2019.03.01

[2]    

Chua MLK, Wee JTS, Hui EP, et al. Nasopharyngeal carcinoma[J]. Lancet, 2016, 387（10022）: 1012-1024. DOI:10.1016/S0140-6736（15）00055-0

[3]    

Hirai H, Maru Y, Hagiwara K, et al. A novel putative tyrosine kinase receptor encoded by the eph gene[J]. Science, 1987, 238: 1717-1720. DOI:10.1126/science.2825356

[4]    

Pasquale EB. Eph-ephrin bidirectional signaling in physiology and disease[J]. Cell, 2008, 133（1）: 38-52.

[5]    

Anderson DJ, Barbacld M, Berg LJ, et al. Unified nomenclature for eph family receptors and their ligands, the Ephrins[J]. Cell, 1997, 90（3）: 403-404.

[6]    

Lisabeth EM, Falivelli G, Pasquale EB. Eph receptor signaling and ephrins[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol, 2013, 5（9）: a009159. DOI:10.1101/cshperspect.a009159

[7]    

Pasquale EB. Eph receptor signalling casts a wide net on cell behaviour[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2005, 6（6）: 462-475.

[8]    

Ireton RC, Chen J. EphA2 receptor tyrosine kinase as a promising target for cancer therapeutics[J]. Current Cancer Drug Targets, 2005, 5: 149-157. DOI:10.2174/1568009053765780

[9]    

Wykosky J, Debinski W. The EphA2 receptor and ephrinA1 ligand in solid tumors:function and therapeutic targeting[J]. Mol Cancer Res, 2008, 6（12）: 1795-1806. DOI:10.1158/1541-7786.MCR-08-0244

[10]    

Tandon M, Vemula SV, Mittal SK. Emerging strategies for EphA2 receptor targeting for cancer therapeutics[J]. Review, 2011, 15（1）: 31-51.

[11]    

Pasquale EB. Eph receptors and ephrins in cancer:bidirectional signalling and beyond[J]. Nat Rev Cancer, 2010, 10（3）: 165-180. DOI:10.1038/nrc2806

[12]    

Beauchamp A, Debinski W. Ephs and ephrins in cancer:ephrin-A1 signalling[J]. Semin Cell Dev Biol, 2012, 23（1）: 109-115.

[13]    

Miao H, Wei BR, Peehl DM, et al. Activation of EphA receptor tyrosine kinase inhibits the Ras/MAPK pathway[J]. Nat Cell Biol, 2001, 3（5）: 527-530. DOI:10.1038/35074604

[14]    

Yang NY, Fernandez C, Richter M, et al. Crosstalk of the EphA2 receptor with a serine/threonine phosphatase suppresses the Akt-mTORC1 pathway in cancer cells[J]. Cell Signal, 2011, 23（1）: 201-212. DOI:10.1016/j.cellsig.2010.09.004

[15]    

Miao H, Li DQ, Mukherjee A, et al. EphA2 mediates ligand-dependent inhibition and ligand-independent promotion of cell migration and invasion via a reciprocal regulatory loop with Akt[J]. Cancer Cell, 2009, 16（1）: 9-20.

[16]    

Miao H, Gale NW, Guo H, et al. EphA2 promotes infiltrative invasion of glioma stem cells in vivo through cross-talk with Akt and regulates stem cell properties[J]. Oncogene, 2015, 34（5）: 558-567. DOI:10.1038/onc.2013.590

[17]    

Paraiso KH, Das Thakur M, Fang B, et al. Ligand-independent EPHA2 signaling drives the adoption of a targeted therapy-mediated metastatic melanoma phenotype[J]. Cancer Discov, 2015, 5（3）: 264-273. DOI:10.1158/2159-8290.CD-14-0293

[18]    

Petty A, Myshkin E, Qin H, et al. A small molecule agonist of EphA2 receptor tyrosine kinase inhibits tumor cell migration in vitro and prostate cancer metastasis in vivo[J]. PLoS One, 2012, 7（8）: e42120. DOI:10.1371/journal.pone.0042120

[19]    

Koshikawa N, Hoshino D, Taniguchi H, et al. Proteolysis of EphA2 converts it from a tumor suppressor to an oncoprotein[J]. Cancer Res, 2015, 75（16）: 3327-3339. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-14-2798

[20]    

Ieguchi K, Tomita T, Omori T, et al. ADAM12-cleaved ephrin-A1 contributes to lung metastasis[J]. Oncogene, 2014, 33（17）: 2179-2190. DOI:10.1038/onc.2013.180

[21]    

Li JY, Xiao T, Yi HM, et al. S897 phosphorylation of EphA2 is indispensable for EphA2-dependent nasopharyngeal carcinoma cell invasion, metastasis and stem properties[J]. Cancer Lett, 2019, 444: 162-174. DOI:10.1016/j.canlet.2018.12.011

[22]    

Tan P, Liu Y, Yu C, et al. EphA2 silencing in nasopharyngeal carcinoma leads to decreased proliferation, invasion and increased sensitization to paclitaxel[J]. Oncol Lett, 2012, 4（3）: 429-434. DOI:10.3892/ol.2012.746

[23]    

Wang Y, Liu Y, Li G, et al. Ephrin typeA receptor 2 regulates sensitivity to paclitaxel in nasopharyngeal carcinoma via the phosphoinositide 3kinase/Akt signalling pathway[J]. Mol Med Rep, 2015, 11（2）: 924-930.

[24]    

卢善翃, 王芸芸, 李果, 等. EphA2经P-糖蛋白调控鼻咽癌紫杉醇敏感性的实验研究[J]. 中国耳鼻咽喉颅底外科杂志, 2018, 1（24）: 33-38.

[25]    

Fingeroth JD, Weis JJ, Tedder TF, et al. Epstein-Barr virus receptor of human B lymphocytes is the C3d receptor CR2[J]. Immunology, 1984, 81（14）: 4510-4514.

[26]    

Mullen MM, Keith MH, Richard L, et al. Structure of the epstein-barr virus gp42 protein bound to the MHC class ⅢReceptor HLA-DR1[J]. Molecular Cell, 2002, 9（2）: 375-385.

[27]    

Nemerow GR, Mold C, Schwend VK, et al. Identification of gp350 as the viral glycoprotein mediating attachment of Epstein-barr virus（EBV） to the EBV/C3d receptor of B cells:sequence homology of gp350 and C3 complement fragment C3dt[J]. J Virol, 1987, 61（5）: 155-158.

[28]    

Connolly SA, Jackson JO, Jardetzky TS, et al. Fusing structure and function:a structural view of the herpesvirus entry machinery[J]. Nat Rev Microbiol, 2011, 9（5）: 369-381. DOI:10.1038/nrmicro2548

[29]    

Ressing ME, Leeuwen DV, Verreck FAW, et al. Interference with T cell receptor-HLA-DR interactions by Epstein-Barr virus gp42 results in reduced T helper cell recognition[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2003, 100（20）: 11583-1188. DOI:10.1073/pnas.2034960100

[30]    

Sathiyamoorthy K, Jiang J, Hu YX, et al. Assembly and architecture of the EBV B cell entry triggering complex[J]. PLoS Pathog, 2014, 10（8）: e1004309. DOI:10.1371/journal.ppat.1004309

[31]    

Borza CM, Hutt-Fletcher LM. Alternate replication in B cells and epithelial cells switches tropism of Epstein-Barr virus[J]. Nat Med, 2002, 8（6）: 594-599. DOI:10.1038/nm0602-594

[32]    

Kirschner AN, Omerovic J, Popov B, et al. Soluble Epstein-barr virus glycoproteins gH, gL, and gp42 form a 1:1:1 stable complex that acts like soluble gp42 in B-cell fusion but not in epithelial cell fusion[J]. J Virol, 2006, 80（19）: 9444-9454. DOI:10.1128/JVI.00572-06

[33]    

Turk SM, Jiang R, Chesnokova LS, et al. Antibodies to gp350/220 enhance the ability of Epstein-Barr virus to infect epithelial cells[J]. J Virol, 2006, 80（19）: 9628-9633. DOI:10.1128/JVI.00622-06

[34]    

Wang X, Kenyon WJ, Li Q, et al. Epstein-barr virus uses different complexes of glycoproteins gH and gL to infect B lymphocytes and epithelial cells[J]. J Virol, 1998, 72（7）: 109-119.

[35]    

Chesnokova LS, Hutt-Fletcher LM. Fusion of epstein-barr virus with epithelial cells can be triggered by αvβ5 in addition to αvβ6 and αvβ8, and 整联蛋白 binding triggers a conformational change in glycoproteins gHgL[J]. J Virol, 2011, 85（24）: 13214-13223. DOI:10.1128/JVI.05580-11

[36]    

Chesnokova LS, Nishimura SL, Hutt-Fletcher LM. Fusion of epithelial cells by Epstein-Barr virus proteins is triggered by binding of viral glycoproteins gHgL to 整联蛋白s &α;v&β;6 or &α;v&β;8[J]. PNAS, 2009, 106（48）: 20464-20469. DOI:10.1073/pnas.0907508106

[37]    

Chen J, Sathiyamoorthy K, Zhang X, et al. Ephrin receptor A2 is a functional entry receptor for Epstein-Barr virus[J]. Nat Microbiol, 2018, 3（2）: 172-180.

[38]    

Zhang H, Li Y, Wang HB, et al. Ephrin receptor A2 is an epithelial cell receptor for Epstein-barr virus entry[J]. Nat Microbiol, 2018, 3（2）: 1-8.

[39]    

Xiang T, Lin YX, Ma W, et al. Vasculogenic mimicry formation in EBVassociated epithelial malignancies[J]. Nat Commun, 2018, 9（1）: 5009.

[40]    

Miao H, Li DQ, Mukherjee A, et al. EphA2 mediates ligand-dependent inhibition and ligand-independent promotion of cell migration and invasion via a reciprocal regulatory loop with Akt[J]. Cancer Cell, 2009, 16（1）: 9-20.

[41]    

Chang Q, Jorgensen C, Pawson T, et al. Effects of dasatinib on EphA2 receptor tyrosine kinase activity and downstream signalling in pancreatic cancer[J]. Br J Cancer, 2008, 99: 1074-1082. DOI:10.1038/sj.bjc.6604676

[42]    

Wykosky J, Palma E, Gibo DM, et al. Soluble monomeric EphrinA1 is released from tumor cells and is a functional ligand for the EphA2 receptor[J]. Oncogene, 2008, 27（58）: 7260-7273. DOI:10.1038/onc.2008.328

[43]    

Koolpe M, Dail M, Pasquale EB. An ephrin mimetic peptide that selectively targets the EphA2 receptor[J]. J Biol Chem, 2002, 277（49）: 46974-46979. DOI:10.1074/jbc.M208495200

[44]    

Landen CN Jr, Lu C, Han LY, et al. Efficacy and antivascular effects of EphA2 reduction with an agonistic antibody in ovarian cancer[J]. J Natl Cancer Inst, 2006, 98（21）: 1558-1570. DOI:10.1093/jnci/djj414

[45]    

Coffman KT, Hu M, Carles-Kinch K, et al. Differential EphA2 epitope display on normal versus malignant cells[J]. Cancer Res, 2003, 63（22）: 7907-7912.

[46]    

Alves PM, Faure O, Graff-Dubois S, et al. EphA2 as target of anticancer immunotherapy:identification of HLA-A*0201-restricted epitopes[J]. Cancer Res, 2003, 63（23）: 8476-8480.

[47]    

Duxbury MS, Ito H, Zinner MJ, et al. EphA2:a determinant of malignant cellular behavior and a potential therapeutic target in pancreatic adenocarcinoma[J]. Oncogene, 2004, 23（7）: 1448-1456. DOI:10.1038/sj.onc.1207247

[48]    

Wu B, Wang S, De SK, et al. Design and characterization of novel EphA2 agonists for targeted delivery of chemotherapy to cancer cells[J]. Chem Biol, 2015, 22（7）: 876-887. DOI:10.1016/j.chembiol.2015.06.011

[49]    

Lee JW, Han HD, Shahzad MMK, et al. EphA2 immunoconjugate as molecularly targeted chemotherapy for ovarian carcinoma[J]. J Natl Cancer Inst, 2009, 101（17）: 1193-1205. DOI:10.1093/jnci/djp231

[50]    

Bennett G, Brown A, Mudd G, et al. MMAE delivery using the Bicycle toxin conjugate BT5528[J]. Mol Cancer Ther, 2020, 12: 1092.